不藏了!WB 终极技巧:得此十一条,可稳条带!

2023-05-07 18:02 来源:微信公众号 - ShengWuXueBa 作者:生物学霸
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不知道以上崩溃瞬间你中了几条,文章底部留言,分享你做 WB 的崩溃瞬间吧~本来 WB 流程就比较繁琐,不断失败与重复中,无力感更是会反复循环,一个小小的实验,却让人辗转反侧、「秃了脑壳」。



完整的 western blot 实验从样品制备开始,到跑胶、转印、封闭、抗体杂交、成像涉及各个环节,其中任何步骤出现问题,都会影响到最终的实验数据质量。为了保住各位本就余量不多的头发(这是在阴阳谁?!),我们特备了关于电泳和转印环节的 11 条 Tips,让大家在 WB 实验中乘风破浪,不再头秃!


Tip 1:

洗净上样孔


在加样之前,用移液枪吹洗每个上样孔,洗净残留在上样孔中的丙烯酰胺残渣,从而避免畸形条带的出现。


Tip 2:

凝胶过热是大忌


如果凝胶在电泳过程中温度过高,则条带可能会出现「微笑」形状,即条带两侧向上弯曲的现象。切记要正确使用缓冲液,并控制好电泳功率,避免凝胶过热的出现。


Tip 3:

确保样品缓冲液离子强度正确


样品中的盐离子强度过高(或过低),都会导致条带出现偏斜或扭曲。如果样品提取过程中用到高盐溶液,就有可能要在上样前进行稀释或脱盐处理。


Tip 4:

不要过载上样


加大上样量有利于检测稀有目标蛋白。但过大的上样量会导致电泳过程中出现垂直条纹。如果必须大量上样时(> 30 ug 总蛋白),可将电泳电压降低 25%,有助于减少条纹。


Tip 5:

转印三明治要去除气泡


均匀的蛋白质转印需要三明治的各组件之间完全接触,尤其是凝胶和膜完全接触。没有去除的气泡会导致膜上出现空白点,直接影响实验结果!建议使用凝胶滚轮将这些气泡通通赶走!(提示:梯度凝胶最好上下滚动,而不是左右滚动。左右滚动会导致梯度凝胶翘曲和起皱。)


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Tip 6:

转印前的预平衡


湿转和传统半干转时,将凝胶电泳缓冲液替换为转印缓冲液可获得更好的转印效果。电泳缓冲液的带入会增加电导率,从而导致转印过程中产生过多的热量。可在水中短暂冲洗凝胶,然后在转印缓冲液中平衡凝胶 15 分钟,平衡膜 5 分钟。请注意,对于某些快速转印系统,不建议使用凝胶预平衡,请遵循制造商的操作指南。


Tip 7:

NC 膜转印时避免使用 SDS


转印缓冲液中的 SDS 会降低蛋白质与硝酸纤维素膜的结合效率,所以在使用 NC 膜时要避免缓冲液体系内有 SDS。转印前用水冲洗凝胶,以便减少 SDS 带入转印体系。


Tip 8:

PVDF 膜可使用 SDS


SDS 可以促进蛋白质从凝胶中洗脱,如果某些蛋白质难以从凝胶中洗脱,则可以将 SDS 添加到转印缓冲液中,前提是必须使用 PVDF 膜。


Tip 9:

避免膜变干


在转印之前和之后均需保证膜的湿润,从转印三明治中取出后,转印热量会使膜容易变干燥。应迅速将膜浸入预先准备好的缓冲液中,以免膜干燥。(尤其是在使用 PVDF 膜时要格外注意,因为 PVDF 膜是疏水的更容易变干)。如果干了,可将硝酸纤维素膜重新在缓冲液中浸湿,而 PVDF 膜则需要在醇中重新活化。


Tip 10:

半干转印功率及时间设置


使用高电场转印可获得更高的转印效率,但是一定要注意系统的散热能力,避免凝胶过热。转印期间,「三明治」温度升高会导致电阻变化,进而引发转印效率不均一,缓冲液失去缓冲能力,甚至凝胶融化。半干转印在电流下降接近为零时,延长转印时间不会增加转印效果。


Tip 11:

使用两张膜判断蛋白是否会转穿


薄胶或低浓度胶转印过程中蛋白容易转穿,特别是针对小分子量蛋白。可以转印时叠放两张转印膜,然后对第二张膜进行总蛋白染色(丽春红或 Stain-Free 免染)的方法来判断是否已经转穿。


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注:

1. 相关产品仅限科研使用,不作为临床诊断。

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内容策划:王丹琦
内容审核:周育红

图片来源:图虫创意


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编辑: 王凯

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